第一指导教师主要成果:
研究主要集中在前列腺素(PGE2)合成酶mPGES-1和mPGES-2的功能特点以及肾脏疾病的治疗药物方面,其中包括:(1)研究成果阐明了mPGES-1与糖尿病肾病之间的关系;(2)首次发现了mPGES-2在体内的功能作用,下调mPGES-2会促进肝脏中的GLUT2的表达,在肝脏细胞葡萄糖代谢中起重要作用,论文发表在Journal of hepatology期刊上,影响因子11.336;(3)研究发现线粒体复合物I型抑制剂可以通过减少炎症反应和氧化应激来改善阻塞性肾病。(4)另外还有研究发现谷氨酰胺酶1(GLS1)的抑制剂可以有效的改善多囊肾病的发生发展。至今以第一作者发表SCI收录论文8篇。该导师现在是江苏省双创博士人才和江苏省特聘教授,并曾作为“Plos One”和“Mediators of Inflammation”的审稿人。现任中国药理学会肾脏药理分会委员,中国药理学会生化与分子药理学专业委员会青年委员,中国生理学会肾脏生理专业委员会青年委员。
近几年来主要研究成果为:
一 、发表的论文:
[1] Sun Y, Jia Z, Yang G, Kakizoe Y, Liu M, Yang K, Liu Y, Yang B, and Yang T. mPGES-2 Deletion Remarkably Enhances Streptozotocin-Induced Liver Injury via Induction of Glut2. Journal of Hepatology, Dec;61(6):1328-36, 2014.
[2] Zhu YY, Teng T, Wang H,Guo H, Du L, Yang BX,Yin XX*, Sun Y*. Quercetin inhibits renal cyst growth in vitro and via parenteral injection in a polycystic kidney disease mouse model,Food & Function, 2018 Jan 24;9(1):389-396.
[3] Wang H, Zhu YY, Wang L, Teng T, Zhou M, Wang SG, Tian YZ, Du L, Yin XX, Sun Y*.Mangiferin ameliorates fatty liver via modulation of autophagy and inflammation in high-fat-diet induced mice. Biomedicine & Pharmacotherapy. Oct 9; 96: 328-335. 2017.
[4] Sun Y, Zhang Y, Zhu Y, Zhang A, Huang S, Yin X, Ding G, Liu M and Jia Z. Inhibition of Mitochondrial Complex-1 Restores the Downregulation of Aquaporins in Obstructive Nephropathy. American Journal of Physiology: renal physiology. 2016 Oct 1;311(4):F777-F786
[5] Zhang Y, Sun Y, Ding G, Huang S, Zhang A, Jia Z Inhibition of Mitochondrial Complex-1 Prevents the Downregulation of NKCC2 and ENaCα in Obstructive Kidney Disease. Scientific Report. Jul 24;5:12480, 2015 (co-first author)
[6] Sun Y, Zhang Y, Zhao D, Zhang A, Huang S and Jia Z. Rotenone Remarkably Attenuates Oxidative Stress, Inflammation, and Fibrosis in Chronic Obstructive Uropathy. Mediators of Inflammation, 2014 2014:670106.
[7] Jia Z, Sun Y, Liu S, Liu Y, Yang K and Yang T. COX-2 but not mPGES-1 Contributes to Renal PGE2 Induction and Diabetic Proteinuria in Mouse with Type-1 Diabetes. Plos One, 2014 Jul 1;9(7):e93182(co-first author).
[8] Sun Y, Jia Z, Liu G, Zhou L, Yang B and Yang T. PPARƔ agonist rosiglitazone selectively suppresses renal mPGES-1/PGE2 pathway in db/db mice. PPAR Research, 2013:612971, 2013;
二、主要参与完成的课题:
名称1:Natriuretic action of renal EP1 in mineralocorticosteroid excess 项目号:11SDG7480006
来源:AHA(American Heart Association)美国心脏协会
经费:$300,000 起止年份:2011-2015
名称2:GLS1调控谷氨酰胺代谢在ADPKD发生发展中的作用
项目号:81603179
来源:国家自然科学基金(青年科学基金项目)
经费:173000元 起止年份:2017-2019
名称3:新药创制与评价(团队项目)
来源:徐州医科大学
经费:200000元 起止年份:2016-2018
一、申请理由:
范晨宇,男,临床医学系临床专业2017级本科生,曾获校级三等奖学金,优秀班干部等。现作为成员参与“挑战杯”竞赛的“基于抑制mPGES-2活性的芒果苷在急慢性肝脏疾病中的作用及机制探究”项目。拥有扎实的基础医学及生物学知识和浓厚的科研兴趣,自2018年上半年开始进入新药研究与临床药学重点实验室,一直跟随老师学习,能熟练使用实验室常见的精密仪器,能够熟练地运用中国知网、Pubmed等数据库查阅资料,娴熟操作文献管理软件EndnoteX9,科研作图软件Graphpad prism以及Photoshop等,具有一定的英文论文写作基础,基于以上科研经历在此与其他成员创新性地探究ADPKD的发病机制。
薛钧文,男,临床医学系临床医学专业2017级本科生,现担任临床医学系17本临床5班文体委员,有较强的组织、领导及团队协作能力。曾获得校一等奖学金、社会奖学金、校优秀学生干部、优秀团员、团的活动积极分子等荣誉称号,有很强的自主学习能力,亦有扎实充分的医学、理科知识基础以及熟练的实验操作技能,对科研怀有浓厚的兴趣,曾经主导组员设计一项生理学机能实验,熟悉各种基本的实验器材及操作,并有优异的阅读能力和英语水平,擅长阅读检索文献材料。
倪想,男,临床医学系临床医学2017级本科生,工作认真负责,有较强的自主学习能力,曾获校级二等奖学金、三好学生,对科研和本课题有很大的兴趣,对科学问题刻苦钻研,刨根问底,能熟练使用中国知网和迈特思创等检索平台,掌握一定的实验技能,同时具有较好的信息处理能力。
刘煜清,女,药学院临床药学专业2018级本科生,现担任药学院学生会体育部干事,工作认真,学习态度端正,心思细腻,热爱科研,严谨负责,能较熟悉的操作实验仪器,擅长信息收集整理,能较熟练用软件管理文献。
两位主持人长期合作,各有所长,配合默契,另外两名项目成员也都经历过科研培训,具有一定的实验技能与组织能力。团队成员来自不同的年级和院系,也扩大了整体的知识面以及增加了团队实验的时间。项目指导老师具有此领域扎实的专业知识和丰富的实验研究基础,给团队提供了较好的平台。以申请者现有的研究基础以及对项目实践的热情,推动了本次创新训练计划的申报。
二、项目方案:
1、项目研究背景(国内外的研究现状及研究意义、项目已有的基础,与本项目有关的研究积累和已取得的成绩,已具备的条件,尚缺少的条件及方法等)
常染色体显性遗传型多囊肾病(autosomal dominant polycystic kidney disease,ADPKD)是人类常见的单基因遗传疾病之一,主要发病于成年且预后不良。发病率约为1/1000~1/400,主要是由Pkd1(polycystic kidney disease 1)或Pkd2(polycystic kidney disease 2)基因突变所致[1]。Pkd1和Pkd2基因分别编码多囊蛋白PC1(polycystin-1)和PC2(polycystin-2)[2, 3], 其中Pkd1发生突变所导致的多囊肾病较严重,且发病时间早于Pkd2突变。该病以双侧肾脏多发性进行性生长的囊泡为主要特征,增大的囊泡将不断地挤压周围正常的肾脏组织,导致肾脏结构的改变和肾功能的丧失,最终导致终末期肾病(End-stage renal disease, ESRD)[4, 5]。据统计,在全球有4%~10% 的ESRD患者是由ADPKD所导致的。 ADPKD终末期患者主要依赖于终身血液透析或肾移植来维持生命[6]。目前尚无有效的临床药物来延缓多囊肾病的发展,所以寻找新的有效治疗药物至关重要。
图1. ADPKD的发病机制和治疗策略。
如图1所示, PC1是一种上皮细胞膜受体, PC2是一种非选择性钙离子通道,两者表达于肾小管上皮细胞的纤毛部位。 PC1和PC2可相互作用形成功能复合体,调节细胞外Ca2+ 的内流,进而引起内质网中Ca2+ 的释放,来维持Ca2+ 的正常水平。当Pkd1或Pkd2基因发生突变后,细胞内Ca2+ 浓度降低,对腺苷酸环化酶的抑制作用减弱,从而使细胞内cAMP(cyclic adenosine monophosphate,环磷酸腺苷)的生成增加,进一步激活PKA( protein kinase A,蛋白激酶A),一方面通过激活Ras/Erk信号通路促进增殖;另一方面可以活化CFTR(cystic fibrosis transmembrane conductance regulator,囊性纤维化跨膜转导调节因子)从而介导Cl-和H2O分子向囊腔内分泌。最终引起囊泡上皮细胞异常增殖和囊液过度分泌而形成囊泡,继而导致多囊肾病理学改变。
ADPKD的发病机制复杂,尚不完全清楚。许多研究表明,ADPKD发展过程中,是通过多种细胞内信号途径调控细胞异常增殖和囊液分泌,包括MAPK/ ERK通路[7, 8]、PI3K/AKT通路[9]、mTOR通路[10]、和Wnt/β-catenin通路[11]。 最近,多项研究发现,许多天然化合物通过这些途径来抑制囊泡并减轻ADPKD的进展[12-14]。
(1)PKD1杂合小鼠在缺血再灌注后相比于野生鼠肾损伤更严重并伴随微囊泡的形成
有文献研究表明,在10-12周龄雄性PKD1杂合小鼠和野生小鼠中诱导肾缺血/再灌注后,与野生型小鼠相比,杂合子小鼠的钠和钾排泄率和的血清肌酐均显著升高。六周后,观察到杂合子中肾小管扩张、微囊变大和肾纤维化现象。而当缺血时间从32分钟增加到35分钟时,杂合子的早期死亡率明显高于野生鼠[15]。如图2所示,在预实验中,我们对肾脏缺血45分钟后恢复其血供,24h后的血清分析发现BUN的增加比野生小鼠高许多。后续的观察发现,PKD1杂合小鼠的死亡率明显高于野生小鼠。总的来说,相比于野生鼠,PKD1杂合小鼠在缺血再灌注后有着更加严重的肾损伤,且这一现象目前原因不明,我们猜想对这一现象的准确解释将对于ADPKD的发病机制的研究有重要的意义。
图2. 缺血再灌注前后PKD1杂合小鼠与野生小鼠的BUN对比以及两组鼠的生存曲线
(2)生物信息学分析显示PKD1杂合小鼠在缺血再灌注后迅速死亡与体内增强的细胞凋亡通路有关
我们将PKD1杂合小鼠和野生小鼠进行肾脏动脉夹闭45分钟,之后恢复肾脏血供,24h后处死小鼠,取PKD1杂合小鼠和野生小鼠的肾脏组织做蛋白组学分析(图3),从免疫炎症角度,筛选出相关蛋白并将所得到的变化显著的蛋白以及其所在的潜在生物途径(Biological process)用Cytoscape软件进行数据处理,最终筛选出了包含有6个变化显著的蛋白的细胞凋亡途径【GO:0006915】,因此我们猜测PKD1小鼠在缺血再灌注后迅速死亡与该途径的增强有关。并且这6个蛋白中,Prkcd(Protein kinase C delta type蛋白激酶C delta型)和Cycs(cytochrome c 细胞色素C)与细胞凋亡通路密切相关,因此我们认为Prckd以及细胞色素C在小鼠肾脏缺血再灌注前后发挥重要的作用,研究其发挥作用的内在机制将有助于研究出PKD1杂合小鼠在缺血再灌注后死亡率高于野生小鼠的原因。
图3 生物信息学分析的热图分析结果
【参考文献】
[1] Ghata, J. and Cowley, B.D., Jr. Polycystic Kidney Disease. Compr Physiol, 2017, 7(3);945-975.
[2] Harris, P.C. and Torres, V.E. Polycystic kidney disease. Annu Rev Med, 2009, 60;321-37.
[3] Leuenroth, S.J. and Crews, C.M. Targeting cyst initiation in ADPKD. J Am Soc Nephrol, 2009, 20(1);1-3.
[4] Zhou, J. Polycystins and primary cilia: primers for cell cycle progression. Annu Rev Physiol, 2009, 71;83-113.
[5] Cornec-Le Gall, E.,et al. Type of PKD1 mutation influences renal outcome in ADPKD. J Am Soc Nephrol, 2013, 24(6);1006-13.
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[8] Calvet, J.P. Strategies to inhibit cyst formation in ADPKD. Clin J Am Soc Nephrol, 2008, 3(4);1205-11.
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[12] Park, E.Y., Woo, Y.M., and Park, J.H. Polycystic kidney disease and therapeutic approaches. BMB Rep, 2011, 44(6);359-68.
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[15] BASTOS A P, PIONTEK K, SILVA A M, et al. Pkd1 Haploinsufficiency Increases Renal Damage and Induces Microcyst Formation following Ischemia/Reperfusion [J]. Journal of the American Society of Nephrology, 2009, 20(11): 2389-402.
2、项目研究目标及主要内容
【研究目标】
明确细胞凋亡通路对PKD1杂合小鼠在缺血再灌注后肾病变加重和死亡率增加的影响。阐明细胞凋亡通路对于ADPKD发生发展的影响,尝试阐明其中的发生机制。
【研究内容】
一、Ksp-Cre;Pkd1fl/+ 小鼠模型的建立
Ksp-Cre;Pkd1fl/fl小鼠是利用Cre-loxp系统建立的肾脏特异性敲除Pkd1的小鼠模型,由Ksp-Cre小鼠以及Pkd1fl/fl小鼠繁殖可得到Ksp-Cre;Pkd1fl/+小鼠,之后可使Ksp-Cre;Pkd1fl/+小鼠之间配繁得到所需数量的Ksp-Cre;Pkd1fl/+小鼠。值得注意的是,Ksp-Cre;Pkd1fl/fl小鼠在出生后2周内发生肾衰竭,3周左右死亡,而同窝的Ksp-Cre;Pkd1fl/+小鼠则表型正常。将所得到的小鼠取鼠尾运用PCR法作基因鉴定,如图 4 所示,例如Ksp-Cre;Pkd1fl/+鼠的鉴定,其中Cre呈现阳性且Flox电泳条带在300和400bp两处呈现阳性的小鼠即为目的敲除小鼠。
图4. Ksp-Cre;Pkd1fl/+小鼠的来源及鉴定。(A)肾脏特异性敲除Pkd1基因的小鼠来源。(B)采用 PCR 方法鉴定小鼠的基因型。
二、明确细胞凋亡通路对于PKD1杂合小鼠在缺血再灌注后肾病变加重和死亡率增加的影响
(1)对于细胞凋亡通路进行主要分子过表达
对于PKD1杂合小鼠和野生小鼠进行细胞凋亡通路中主要研究分子(Prkcd以及细胞色素C)过表达,增强此通路效应,再对于这两组小鼠进行IR实验,24h后处死小鼠,取血测SCr(serum creatinine)以及BUN(Blood urea nitrogen);取肾脏组织做H&E染色、免疫组化分析以及电镜照片分析囊泡的形成情况;提取肾脏RNA作RT-PCR分析;提取肾脏组织蛋白作Western Blot 分析PC1、Prkcd以及细胞色素C的表达水平。
(2)对于细胞凋亡通路进行主要分子低表达
对于PKD1杂合小鼠和野生小鼠敲低细胞凋亡通路中主要研究分子(Prkcd以及Cycs)以降低此通路效应,再对于这两组小鼠进行IR实验,24h后处死小鼠,取血清测SCr以及BUN;取肾脏组织做H&E染色、免疫组化分析以及电镜照片分析囊泡的形成情况;提取肾脏RNA作RT-PCR分析;提取肾脏组织蛋白作Western Blot 检测PC1、Prkcd以及细胞色素C的表达水平。
【数据分析】
应用SPSS18.0统计软件对结果进行统计, P<0.05为差异有统计学意义。
3、项目创新特色概述
本课题主要研究细胞凋亡通路对ADPKD发生发展的影响,阐明肾缺血再灌注后PKD1杂合小鼠死亡率高于野生小鼠的内在机制。本课题将对ADPKD的发生发展提出新的认识,很可能为ADPKD相关疾病的研究和治疗提供一个新的切入点。
4、项目研究技术路线
5、研究进度安排
本项目拟在两年内(2019.05~2021.05)完成,具体安排如下:
第一阶段:2019年5月至2019年11月
1)建立Ksp-Cre;Pkd1fl/+小鼠模型,喂养3个月以上。
2)使用病毒载体对实验组小鼠体内Prckd以及细胞色素C分子进行过表达或敲低。
第二阶段:2019年12月至2020年10月
1)对于实验组和对照组进行肾脏缺血再灌注后处死小鼠,取小鼠外周血以及肾脏组织。
2)检测实验小鼠以及对照小鼠外周血BUN以及Creatinine含量,做肾脏切片进行H&E染色,做电镜照片,进行免疫荧光染色。
3)根据以上实验结果,进一步完善实验设计。
第三阶段:2020年11月至2021年5月
1)在分子水平进行RT-PCR实验,进行Western Blot 实验检测PC1、Prkcd以及Cycs的表达水平。
2)整理资料、总结,撰写论文,上报科研成果。
6、项目组成员分工
项目组成员
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主要任务
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范晨宇
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负责项目的总体设计,参与开展所有实验,论文和结题,报告的撰写
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薛钧文
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负责对小鼠进行缺血再灌注实验,对小鼠组织蛋白进行Western blot 实验检测PC1、Prkcd以及细胞色素C的表达水平
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倪想
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负责检测小鼠血BUN以及Creatinine含量,制作电镜照片,进行HE及免疫组化染色
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刘煜清
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建立Ksp-Cre;Pkd1fl/+ 小鼠模型,资料整理和数据处理
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三、学校提供条件:
1.实验平台
项目组的实验基地是徐州医科大学新药与临床应用重点实验室,该实验室建有净化动物室、生化检测室、分子生物学室、细胞培养室、精密仪器室及大型仪器室等多个功能实验室,具备进行药理学实验、生化指标测定与分子生物学实验等仪器设备及条件。目前已建立实验室开放制度,可以为项目的开展提供所需的实验场所。
2.配套经费、相关扶持政策
学校支持并鼓励大学生参与科研实践活动。本项目团队所属的临床医学系,注重学生实践能力和科研素质的培养,严谨、负责的导师对训练项目进行实时指导,为项目的顺利实施提供条件保障。